研究报告

一个莱茵衣藻WD40蛋白正向调控油脂的积累  

于俊梅1 , 李兴涵2 , 费小雯3 , 邓晓东2
1海南大学农学院, 海口, 571101
2中国热带农业科学院热带生物技术研究所, 农业部热带作物生物技术重点开放实验室, 海口, 571101
3海南医学院理学院, 海口, 571101
作者    通讯作者
水生生物研究, 2016 年, 第 5 卷, 第 8 篇   
收稿日期: 2016年08月30日    接受日期: 2016年09月21日    发表日期: 2016年10月13日
© 2016 BioPublisher 生命科学中文期刊出版平台
本文首次发表在 《基因组学与应用生物学》(2016年第35卷第1期118-123页)上。现依据版权所有人授权的许可协议,采用 Creative Commons Attribution License,协议对其进行授权,再次发表与传播。只要对原作有恰当的引用, 版权所有人允许并同意第三方无条件的使用与传播。
推荐引用:

引用格式(中文):

于俊梅等, 2016,  一个莱茵衣藻WD40蛋白正向调控油脂的积累, 基因组学与应用生物学, 35 (1): 118-123 (10.13417/j.gab.035.000118)

引用格式(英文):

Yu et al., 2016, A WD40-repeat protein positively regulates the accumulation of lipids in Chlamydomonas reinhardtii, Genomics and Applied Biology, 35(1): 118-123 (10.13417/j.gab.035.000118)

摘要

WD40蛋白(WD40-repeats)一般存在于真核生物中,具有广泛的生理生化功能。本研究以莱茵衣藻一个WD40 (Cre12.g552900)蛋白为研究对象,通过遗传转化的方法实现对该基因的敲除和过量表达。转基因藻株检测结果显示CrWD40 RNAi转基因藻株油脂含量减少了11%~24%,而CrWD40过量表达转基因藻株油脂含量增加了14.3%~75%,正反两方面实验说明CrWD40对油脂积累起到正向调控的作用。

关键词
WD40蛋白;油脂;RNAi;莱茵衣藻

随着人类环保意识的上升,石油燃料所造成的污染问题越来越受到人类的重视,绿色能源成为当今研究的一个热点。其中,利用微藻生产生物柴油具有较大的优势,目前欧美多国已在此领域投入人力物力,加大研发力度。

 

利用微藻来生产生物柴油包括藻株选育、保种和小规模繁殖、规模化养殖、微藻采集、以及藻油和生物柴油生产等多步工艺步骤。其中优良藻种的选育十分重要。本研究工作主要集中于藻种的分离纯化与小规模繁殖上。但微藻的油脂代谢以及代谢调控领域研究基础还很薄弱。莱茵衣藻(Chlamydomonas reinhardtii)是单细胞,带鞭毛且遗传背景较为完善的真核生物,是研究油脂代谢基因的理想藻株。

 

WD40结构域以甘氨酸-组氨酸开始,色氨酸-天冬氨酸(Trp-Asp, WD)结尾,该结构域含有约40个氨基酸。而含有此结构域的蛋白称作WD40蛋白。WD40蛋白中含有1~10个串联的WD40结构域(Simon et al., 1991)。WD40蛋白一般存在于真核生物中,具有广泛的分子和细胞生物学功能。植物中WD40蛋白调控多个发育和生化途径(Neer et al., 1994)。WD40蛋白为蛋白复合体的组装提供了平台,介导其他蛋白质互相结合。这些复合体像G蛋白、TAFII转录因子和E3泛素连接酶。已报道人类WDR5可以识别并结合到H3的N末端,WDR5可以促进组蛋白H3赖氨酸4 (H3K4)甲基化(Couture et al., 2006; Han et al., 2006)。拟南芥基因组共有269个WD40基因,在酵母、果蝇和人类中都存在同源基因(van Nocker and Ludwig, 2003)。莱茵衣藻中通过以拟南芥基因为源序列进行同源搜索,发现共有100个WD40蛋白同源基因,其中Cre12.g552900在莱茵衣藻缺氮培养时,mRNA水平显著降低。由于衣藻在缺氮培养时油脂积累显著上升,该基因的下调表达,是否与油脂积累具有相关性,带着这个疑问,我们通过构建该基因RNAi干涉载体,以及构建该基因以CAMV 35S为启动子的过量表达载体,同时对该蛋白进行亚细胞定位,以下是研究结果。

 

1结果与分析

1.1 CrWD40基因生物信息学分析

本研究涉及的莱茵衣藻WD40蛋白在JGI基因组数据库中的local name为Cre12.g552900,NCBI GenBank的登录号为ABG33844。CrWD40基因全长1 044 bp,编码347个氨基酸残基的蛋白质,具有7个重复WD40结构域,分子式为:C834H1292N226O256S8,分子量为37 211.5,pI为6.94,稳定系数为22.74,属稳定蛋白质,脂肪系数90.49,属亲水性蛋白质,无跨膜结构区,通过Euk-mPLoc2.0预测的亚细胞定位于细胞质。

 

MEGA6.0对CrWD40聚类分析显示:CrWD40与团藻WD40蛋白同源基因的同源率为100%,与拟南芥、酿酒酵母、和水稻WD40蛋白关系较近(图1)。

 

 

图1 莱茵衣藻CrWD40与酵母, 拟南芥, 水稻, 团藻, 小麦, 玉米CrWD40同源基因聚类分析

Figure 1 Clustering analysis of CrWD40 orthologous genes in C. Reinhardtii, A. thaliana, O. sativa, V. nagariensis, T. urartu, and Z. mays

 

1.2 CrWD40 RNAi干涉载体的构建

通过Triol法从培养至对数生长期的莱茵衣藻CC425中提取总RNA,将得到的RNA反转录成cDNA,以此CDNA为模板进行扩增,得到CrWD40基因干涉片段序列(图2A)。CrWD40正反向片段连接中间载体T282 EcoRI酶切鉴定(图2B)。正反向片段连接干涉载体pMaa7 IR/XIR,用EcoRI对得到充足重组载体进行酶切鉴定(图2C)。将构建完成的载体命名为CrWD40-

 

 

图2 CrWD40 RNAi干涉载体构建  

注: M: 2 000 Marker; A: CrWD40 RNAi干涉片段PCR扩增; B: CrWD40反向重复序列克隆进中间载体酶切鉴定,中间载体T282-CrWD40以EcoRI酶切; C: CrWD40 RNAi干涉载体构建酶切鉴定, 干涉载体pMaa7 IR/WD40IR以EcoRI酶切

Figure 2 The construction of CrWD40 RNAi interference vector

Note: M: 2 000 Marker; A: RNAi fragments amplified by PCR; B: RNAi-t282 intermediate vector EcoRI digested; C: RNAi-Maa7 /XIR interfering vector EcoRI digested

 

1.3 CrWD40 RNAi干涉载体转化莱茵衣藻CC425及转基因藻株检测

通过生物量曲线表明,与含空白载体的转基因藻株相比较,CrWD40-RNAi转基因藻株细胞的生长较对照缓慢(图3A)。通过油脂曲线表明,相对于含空白载体的转基因藻株,CrWD40 RNAi转基因藻株体内油脂含量明显显著下降,降幅范围为11%~24% (第4天) (图3B),说明WD40基因对莱茵衣藻体内油脂积累起着正向调控的作用。共聚焦显微镜镜检结果也明确显示CrWD40转基因藻株油脂含量下降(图3C)。为了检测上述CrWD40干涉载体对莱茵衣藻CC425体内目标基因的沉默效果,本实验采用实时荧光定量PCR方法检测CrWD40转基因藻株中CrWD40 mRNA的表达丰度(Livak and Schmittgen, 2001) (图3D)。结果显示,CrWD40 RNAi转基因藻株与对照CC425和pMaa7 IR/XIR转基因藻株比较,mRNA丰度显著下降,降幅为85%~89%,说明CrWD40被有效沉默。

 

 

图3 CrWD40 RNAi转基因藻株检测

注: A: CrWD40 RNAi转基因藻株12, 35, 59生长较对照缓慢; B: CrWD40 RNAi转基因藻株12, 35, 59油脂含量较对照显著下降, 降幅为11%~24%; C: 显微镜检显示CrWD40 RNAi转基因藻株油脂含量下降(图中亮色部分为油滴); D: CrWD40 RNAi转基因藻株mRNA丰度显著下降。实验数据利用SPSS软件做统计学分析, 显著(p<0.05)和极显著(p<0.01)以*和**表示

Figure 3 The detection of CrWD40 RNAi transgenic algae

Note: A: 12, 35, 59 transformants of CrWD40 growth speed had decreased; B: Oil content of transformants 12, 35, 59 had decreased 11%~24%; C: Took pictures through fluorescence microscope and it was obvious that the oil content had decreased; D: Results showed that interference effect of CrWD40 was obvious. Using SPSS statistical software to perform statistical analysis. Results was indicated as *p< 0.05, ** p< 0.01, respectively

 

1.4 CrWD40在莱茵衣藻中过量表达

CrWD40基因经PCR扩增后得到1 044 bp的全长片段。测序后与JGI莱茵衣藻数据库中的序列比对同源率为100%。该片段经酶切后克隆进表达载体pCAMBIA1302。采用玻璃珠法转化莱茵衣藻CC425。转基因藻株经PCR鉴定后确认有目标基因插入。转基因藻株生物量检测结果显示,与对照(pCAMBIA1302转基因藻株)相比,CrWD40过量表达转基因藻株生物量增加了16.3%~25.6% (图4A)。转基因藻株油脂含量检测结果显示,与对照相比,CrWD40过量表达转基因藻株第四天油脂含量增加了14.3%~75% (图4B)。此实验结果与通过RNAi测得的实验结果可以互补验证,CrWD40基因促进莱茵衣藻油脂的积累。显微观察结果也证明了转基因藻株油脂含量增加(图4C)。转基因藻株CrWD40 mRNA的丰度检测结果显示,CrWD40 RNAi转基因藻株与对照比较,mRNA丰度提高了770%~850% (图4D),说明CrWD40基因过量表达。

 

 

图4 CrWD40基因过表达藻株积累

注: A: CrWD40过量表达转基因藻株27, 43, 86生长较对照迅速; B: CrWD40过量表达转基因藻株27, 43, 86油脂含量较对照显著升高, 升幅为14.3%~75%; C: 显微镜检显示CrWD40过量表达转基因藻株油脂含量增加(图中亮色部分为油滴); D: CrWD40过量表达转基因藻株27, 43, 86 mRNA丰度增加了770%~850%。实验数据利用SPSS软件做统计学分析, 显著(p<0.05)和极显著(p<0.01)以*和**表示

Figure 4 The detection of CrWD40 overexpression transgenic algae

Note: A: The 27, 43, 86 overexpression transformants of CrWD40 growth speed had increased; B: Oil content of overexpression transformants 27, 43, 86 had increased14.3%~75%; C: Took pictures through fluorescence microscope and it was obvious that the oil content has increased; D: Results showed that overexpression of CrWD40 was obvious. Using SPSS statistical software to perform statistical analysis. Results was indicated as *p<0.05, ** p<0.01, respectively

 

2讨论

WD40蛋白家族的功能范畴非常广泛,而且它具有一定的选择性,在不同的生理生化过程中与不同的蛋白质相互作用而发挥作用(Ullah et al., 2003; Baudry et al., 2004; Dixon et al., 2005; Ramsay and Glover, 2005)。目前尚未见到WD40家族蛋白调控油脂代谢的报道,本研究通过对莱茵衣藻WD40家族中一个基因Cre12.g552900进行基因敲除和基因过量表达的遗传学实验,结果显示CrWD40正向调控油脂积累。目前微藻油脂代谢调控是近期研究的热点。但报道的基因主要集中在油脂合成途径中的关键酶,如二酰甘油酰基转移酶(DGAT) (Deng et al., 2012)、磷脂酸磷酸酶(PAP) (Deng et al., 2013)、磷脂二脂酰甘油酰基转移酶(PDAT)等。它们在微藻油脂合成中起着重要的作用,但有关调节基因报道较少。目前,在莱茵衣藻JGI数据库WD40家族蛋白有多达100个,这些基因无疑参与了藻细胞的各种生理生化功能,而同源基因是否都在油脂代谢中发挥功能,目前的报道是WD40蛋白通过与MYB蛋白和bHLH蛋白形成复合体的方式起到调控作用,所以我们下一步的工作是通过酵母双杂交技术找出与CrWD40相互作用、共同调节油脂代谢的MYB和bHLH蛋白。为调节微藻油脂改良、转基因良种培育实践应用中打下基础。

 

3材料与方法

3.1藻株菌株及培养条件

莱茵衣藻CC425购自美国杜克大学,将CC425藻株接到HSM液体培养基中(培养条件为200 r/min, 温度24℃, 光照强度为110 μmol•m-2•s-1)培养至对数生长期。T282载体由本实验室自己合成,干涉载体pMaa7/XIR购于Duke大学。

 

3.2 WD40基因生物信息学分析

莱茵衣藻WD40基因多序列比对和聚类分析利用ClustalX 2.1和MEGA6软件完成。MAPK蛋白分子量及等电点的预测通过EXPASy pI/Mw完成(http://web.expasy.org/compute_pi/);蛋白结构分析通过SMART完成,并利用Euk-mPLoc2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/euk-multi-2/)进行莱茵衣藻WD40基因亚细胞定位分析。

 

3.3莱茵衣藻CC425总RNA的提取及反转录

莱茵衣藻CC425按照Trizol的方法提取总RNA。取OD260/280在1.8~2.0之间的样品进行RNA 纯化(沙伟等, 2015)。按照TAKARA公司cDNA合成说明书将RNA反转录为cDNA (Li et al., 2012)。

 

3.4莱茵衣藻WD40基因片段的克隆

根据JGI上公布的CrWD40 Cre12.g552900编码区序列,设计特异性引物如下,5'-GGGACTGACTCGCAAGAAAG-3',5'-AGCGTTGACCTCCGTCCTAT-3'进行PCR扩增,获得目标片段。

 

3.5 CrWD40 RNAi干涉载体的构建

HindⅢ和BamHⅡ双酶切得到CrWD40正向片段与以XbaⅠ和SalⅠ双酶切得到CrWD40反向片段通过载体T282进行连接,然后将正反向片段通过EcoRI酶切回收并将回收片段与表达载体pMaa7IR/XIR进行连接,得到莱茵衣藻WD40干涉载体CrWD40 RNAi。

 

3.6 CrWD40全长基因克隆及过量表达载体构建

提取莱茵衣藻总RNA,反转录成cDNA,以此为模板,ATTTTTCAGCCATGTCA/CTCACAGGCCAATGACCT为引物,扩增CrWD40基因全长。回收扩增的目标条带,克隆进pMD18-T载体;酶切鉴定的阳性克隆,送上海生工生物公司测序。设计两端带有酶切位点的引物,CATGCCATGGTGTCAGCGGAAGTGGCGA (NcoI)/ GGACTAGTTCACAGGCCAATGACCTTC (Spe I)扩增CrWD40全长基因,回收PCR产物,以NcoI和Spe I双酶切PCR产物,克隆进pCAMBIA1302载体中。

 

3.7莱茵衣藻转化

采用玻璃珠法(Kindle, 1990),将pCAMBIA1302载体转入莱茵衣藻CC425体内, 然后涂布于TAP固体培养基(5 μg/mL paromomycin; 过量表达潮霉素B (10 μg/L))上培养至莱茵衣藻生长。挑取单克隆,对其进行细胞生物量、细胞体内油脂含量和WD40基因表达丰度检测。

 

3.8莱茵衣藻体内油脂含量的测定

实验中油脂含量的测定采用的是酸水解法(马帅等, 2010; 国家标准GB_T 5009.6-2003)。

 

作者贡献

李兴涵和于俊梅是本研究的实验设计和实验研究的执行人;于俊梅和李兴涵完成数据分析,论文初稿的写作;费小雯参与实验设计,实验结果分析;邓晓东是项目的构思者及负责人,指导实验设计,数据分析,论文写作与修改。全体作者都阅读并同意最终的文本。

 

致谢

本研究由海南省重大科技专项(ZDZX2013023-1-27)、海南省自然科学基金(313077, 314117)、海南省工程技术研究中心专项(GCZX2012004, GCZX2013004)和中央级公益性科研院所基本科研业务费(ITBB2015ZD07, ITBB2015ZD03)共同资助。

参考文献

Baudry A., Heim M.A., Dubreucq B., Caboche M., Weisshaar B., and Lepiniec L., 2004, TT2, TT8, and TTGl synergistically specify the expression of BANYULS and proanthocyanidin biosynthesis in Arabidopsis thaliana, The Plant Journal, 39(3): 366-380

 

Couture J.F., Collazo E., and Trievel R.C., 2006, Molecular recognition of histone H3 by the WD40 protein WDR5, Nature structural & Molecular Biology, 13(8): 698-703

 

Deng X.D., Cai J.J., and Fei X.W., 2013, Involvement of phosphatidate phosphatase in the biosynthesis of triacylglycerols in Chlamydomonas reinhardti, Journal of Zhejiang University. Science B., 14(12): 1121-1131

 

Deng X.D., Gu B., Li Y.J., Hu X.W., Guo J.C., and Fei X.W., 2012, The roles of acyI-CoA: diacylglycerol acyltransferase 2 genes in the biosynthesis of triacylglycerols by the green algae Chlamydomonas reinhardtii, Molecular Plant, 5(4): 945-947

 

Dixon R.A., Xie D.Y., and Sharma S.B., 2005, Proanthocyanidins-a final frontier in flavonoid research? New Phytologist, 165(1): 9-28

 

Han Z., Guo L., Wang H., Shen Y., Deng X.W., and Chai J., 2006, Structural basis for the specific recognition of methylated histone H3 lysine 4 by the WD-40 protein WDR5, Molecular Cell, 22(1): 137-144

 

Kindle K.L., 1990, High-frequency nuclear transformation of Chlamydomonas reinhardtii, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 87(3): 1228-1232

 

Li Y.J., Fei X.W., and Deng X.D., 2012, Novel molecular insights into nitrogen starvation-induced triacylglycerols accumulation revealed by differential gene expression analysis in green algae Micractinium pusillum, Biomass and Bioenergy, 42: 199-211

 

Livak K.J., and Schmittgen T.D., 2001, Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2 (-Delta Delta C(T)) Method, Methods, 25(4): 402-408

 

Ma S., Fu L.L., Wang M., Hu X.W., Tan D.G., and Zhang J.M., 2010, Comparison of extraction methods of crude fat from microalgae, Zhongguo Youzhi (Chinese Lipids), 35(5): 77-79 (马帅, 付莉莉, 汪萌, 胡小文, 谭德冠, 张家明, 2010, 从微藻中提取粗脂的方法比较, 中国油脂, 35(5): 77-79)

 

Neer E.J., Schmidt C.J., Nambudripad R., and Smith T.F., 1994, The ancient regulatory-protein family of WD-repeat proteins, Nature, 371(6495): 297-300

 

Ramsay N.A., and Glover B.J., 2005, MYB-bHLH-WD40 protein complex and the evolution of cellular diversity, Rends in Plant Science, 10(2): 63-70

 

Sha W., Suo L., Zhang M.J., Zhang C.L., and Zhou B., 2015, Cloning and expression analysis of MYB transcription factor gene RcMYB from Racomitrium canescens, Jiyinzuxue Yu Yingyong Shengwuxue (Genomics and Applied Biology), 34(4): 792-796 (沙伟, 索荔, 张梅娟, 张春蕾, 周伯, 2015, 砂藓MYB转录因子基因RcMYB的克隆及表达分析, 基因组学与应用生物学, 34(4): 792-796)

 

Simon M.I., Strathmann M.P., and Gautam N., 1991, Diversity of G proteins in signal transduction, Science, 252(5007): 802-808

 

Ullah H., Chen J.G., Temple B., Boyes D.C., Alonso J.M., Davis K.R., Ecker J.R., and Jones A.M., 2003, The beta-subunit of the Arabidopsis G protein negatively regulates auxin-induced cell division and affects multiple developmental processes, The Plant Cell, 15(2): 393-409

 

van Nocker S., and Ludwig P., 2003, The WD-repeat protein superfamily in Arabidopsis: conservation and divergence in structure and function, BMC Genomics, 4(1): 50

水生生物研究
• 第 5 卷
阅览选项
. PDF(376KB)
. 全文 HTML
读者评论
. 评论
作者的其他论文
.
于俊梅
.
李兴涵
.
费小雯
.
邓晓东
相关论文
.
WD40蛋白
.
油脂
.
RNAi
.
莱茵衣藻
服务
. Email 推荐给朋友
. 发表评论